Venepunktur - Venipuncture

I medisin er venepunktur eller venepunktur prosessen med å skaffe intravenøs tilgang for venøs blodprøvetaking (også kalt flebotomi ) eller intravenøs behandling . I helsevesenet utføres denne prosedyren av medisinske laboratorieforskere , leger , noen EMT -er , paramedikere , flebotomister , dialyseteknikere og annet sykepleier. I veterinærmedisin utføres prosedyren av veterinærer og veterinærteknikere .

Det er viktig å følge en standard prosedyre for innsamling av blodprøver for å få nøyaktige laboratorieresultater. Enhver feil ved innsamling av blod eller fylling av reagensrør kan føre til feilaktige laboratorieresultater.

Venepunktur er en av de mest rutinemessig utførte invasive prosedyrene og utføres av en av fem årsaker:

1. å skaffe blod til diagnostiske formål;
2. å overvåke nivåer av blodkomponenter;
3. å administrere terapeutiske behandlinger inkludert medisiner, ernæring eller kjemoterapi;
4. å fjerne blod på grunn av for høye nivåer av jern eller erytrocytter ( røde blodlegemer ); eller
5. for å samle blod til senere bruk, hovedsakelig transfusjon enten i donoren eller hos en annen person .

Blodanalyse er et viktig diagnostisk verktøy tilgjengelig for klinikere innen helsevesenet.

Blod hentes oftest fra de overfladiske venene i øvre lem. The median cubital vene , som ligger innenfor cubital fossa anterior til albuen, er nær overflaten av huden uten mange store nerver plassert i nærheten. Andre vener som kan brukes i kubitalfossa for venepunktur inkluderer cephalic , basilic og median antebrachial vener .

Minutmengder blod kan tas ved fingerprøvetaking og samles opp fra spedbarn ved hjelp av en hælstikk eller fra hodebunnsårer med en vinget infusjonsnål .

Flebotomi (snitt i en vene) er også behandling av visse sykdommer som hemokromatose og primær og sekundær polycytemi .

Komplikasjoner

En studie av blodgivere fra 1996 (en større nål brukes i bloddonasjon enn ved rutinemessig venepunktur) fant at 1 av 6.300 donorer pådro seg en nerveskade.

Utstyr

Det er mange måter blod kan hentes fra en vene, og metoden som brukes avhenger av personens alder, tilgjengelig utstyr og hvilken type tester som kreves.

Mesteparten av blodsamlingen i USA, Storbritannia, Canada og Hong Kong er gjort med et evakuert rørsystem. To vanlige systemer er Vacutainer (Becton, Dickinson og selskap) og Vacuette (Greiner Bio-One). Utstyret består av en plastadapter, også kjent som et rør eller nåleholder/nav, en innvendig nål og et vakuumrør. Under visse omstendigheter kan en sprøyte brukes, ofte med en sommerfuglnål , som er et plastkateter festet til en kort nål. I utviklingsland er det evakuerte rørsystemet den foretrukne metoden for å trekke blod.

Med evakuerte eller vakuumrør

Greiner Bio-One produserte det første evakuerte blodoppsamlingsrøret noensinne i 1985 under merkenavnet VACUETTE. I dag selger mange selskaper vakuumrør ettersom patentet på denne enheten nå er i offentlig regi. Disse rørene er produsert med et bestemt gassvolum fjernet fra det forseglede røret. Når en nål fra et nav eller en overføringsenhet settes inn i proppen, trekker rørets vakuum automatisk inn det nødvendige volumet av blod.

Det grunnleggende evakuerte rørsystemet (ETS) består av en nål, en rørholder og de evakuerte rørene. Nålen er festet til rørholderen av phlebotomist før innsamling, eller kan komme fra produsenten som en enhet. Nålen stikker ut gjennom enden av rørholderen, og har en nål i hver ende. Etter først å ha rengjort venepunkturstedet og påført en tourniquet, tar phlebotomisten ut nålen som er festet til rørholderen, setter nålen inn i venen og skyver deretter de evakuerte rørene inn i rørholderen, der rørets propp er gjennomboret av bakenden av nål. Vakuumet i røret trekker deretter automatisk det nødvendige blodet direkte fra venen. Flere vakuumrør kan festes til og fjernes etter tur fra en enkelt nål, slik at flere prøver kan hentes fra en enkelt prosedyre. Dette er mulig på grunn av flere prøvehylser, som er en fleksibel gummifitting over den bakre enden av nålkanylen som tetter nålen til den skyves ut av veien. Dette forhindrer at blodet fritt tømmes ut av nålens bakside som er satt inn i venen, ettersom hvert reagensrør fjernes og det neste pæles. OSHAs sikkerhetsforskrifter krever at nåler eller rørholdere er utstyrt med en sikkerhetsinnretning for å dekke nålen etter prosedyren for å forhindre utilsiktet nålestikkskade.

Beslag og adaptere som brukes til å fylle evakuerte rør fra butterfly nålesett og sprøyter er også tilgjengelige.

Det er flere nålemålere for en flebotomist å velge mellom. De mest brukte er som følger: en 21g (grønn topp) nål, en 22g (svart topp) nål, en 21g (grønn etikett) sommerfuglnål, en 23g (lyseblå etikett) sommerfuglnål og en 25g (oransje eller mørk blå etikett) sommerfuglnål (men denne nålen brukes bare i barnelege eller ekstreme tilfeller da den er så liten at den ofte kan resultere i hemolysering av blodprøven). Det finnes også en rekke rør- og flaskestørrelser og -volumer for forskjellige testkrav.

Tilsetningsstoffer og trekkrekkefølge

Prøverørene der blod samles inn kan inneholde ett eller flere av flere tilsetningsstoffer. Generelt krever tester som krever fullblod blodprøver samlet i prøverør som inneholder en eller annen form for antikoagulant EDTA . EDTA kelaterer kalsium for å forhindre koagulering. EDTA er foretrukket for hematologiske tester fordi det gjør minst mulig skade på cellemorfologi. Natriumcitrat er antikoagulant som brukes i prøver som er samlet for koagulasjonstester. De fleste kjemi- og immunologi -testene utføres på serum, som produseres ved koagulering og deretter separering av blodprøven via sentrifuge. Disse prøvene blir samlet i enten et ikke-additivt rør eller et som inneholder en koaguleringsaktivator . Denne koaguleringsaktivatoren kan forstyrre noen analyser , og derfor anbefales et vanlig rør i disse tilfellene, men vil forsinke testen. Rør som inneholder litiumheparin eller natriumheparin brukes også ofte til en rekke kjemitester, ettersom de ikke krever koagulering og kan sentrifugeres umiddelbart etter innsamling. En kombinasjon av natriumfluorid og kaliumoksalat brukes til glukosetester, ettersom disse tilsetningsstoffene både forhindrer koagulering og stopper glykolose, slik at blodsukkernivået bevares etter oppsamling. Et annet spesialrør er et ugjennomsiktig ravfarget rør som brukes til å samle blod for lysfølsomme analytter, for eksempel bilirubin .

Prøverør er merket med tilsetningsstoffet de inneholder, men proppen på hvert rør er også fargekodet i henhold til tilsetningsstoffet. Selv om farger varierer mellom produsentene, er stoppfarger vanligvis knyttet til hvert tilsetningsstoff som angitt nedenfor. Fordi tilsetningsstoffene fra hvert rør kan stå på nålen som brukes til å fylle rørene, må de tegnes i en bestemt rekkefølge for å sikre at krysskontaminering ikke vil påvirke testingen av prøvene negativt hvis flere rør skal tegnes samtidig. "Trekningsrekkefølgen" varierer etter innsamlingsmetode. Nedenfor i rekkefølgen av trekningen som vanligvis kreves for samlingsmetoden Evacuated Tube System (ETS) er de vanligste rørene, med tilsetningsstoffer og farger:

Vacutainer / prøve rør typer for venepunktur / flebotomi   redigere

Farge eller type rørhett	Tilsetningsstoff	Bruk og kommentarer
Blodkultur flaske	Natriumpolyanetolsulfonat ( antikoagulant ) og vekstmedier for mikroorganismer	Vanligvis tegnes først for minimal risiko for forurensning. To flasker samles vanligvis i en blodprøve; en for aerobe organismer og en for anaerobe organismer .
Lyse blå	Natrium citrat (antikoagulant)	Koagulasjonstester som protrombintid (PT) og delvis tromboplastintid (PTT) og trombintid (TT). Røret må fylles 100%.
Vanlig rødt	Ingen tilsetningsstoffer	Serum : Total komplementaktivitet , kryoglobuliner
Gull (noen ganger rød og grå "tigertopp")	Proppaktivator og serum -separerende gel	Serumseparerende rør : Tubeinversjoner fremmer koagulering. De fleste kjemi-, endokrine og serologiske tester, inkludert hepatitt og HIV .
Mørk grønn	Natrium heparin (antikoagulant)	Kromosomtesting, HLA -typing, ammoniakk , laktat
mintgrønn	Litium heparin (antikoagulant)	Plasma . Rørinversjoner forhindrer koagulering
Lavendel ("lilla")	EDTA ( chelator / antikoagulant)	Helblod : CBC , ESR , Coombs -test , blodplateantistoffer, flytcytometri , blodnivåer av takrolimus og cyklosporin
Rosa	EDTA (chelator / antikoagulant)	Blodtyping og kryssmatching , direkte Coombs-test , HIV- virusbelastning
kongeblå	EDTA (chelator / antikoagulant)	Sporelementer, tungmetaller, de fleste medikamentnivåer, toksikologi
Tan	EDTA (chelator / antikoagulant)	Lede
Grå	Natrium- fluorid ( glykolyse inhibitor) Kalium- oksalat (antikoagulant)	Glukose , laktat
Gul	Acid-citrate-dextrose A (antikoagulant)	Vevstyping , DNA -studier, HIV -kulturer
Perle hvit")	Separerende gel og (K 2 ) EDTA	PCR for adenovirus , toxoplasma og HHV-6

Hos barn

Bruk av lidokain -iontoforese er effektivt for å redusere smerte og lindre nød under venepunktur hos barn. Et nålfritt pulver lignokain- avgivelsessystem har vist seg å redusere smerter ved venepunktur hos barn. Rask dermal bedøvelse kan oppnås ved lokalbedøvelsesinfiltrasjon, men det kan fremkalle angst hos barn som blir skremt av nåler eller forvride huden, noe som gjør det vanskeligere for vaskulær tilgang og øker risikoen for nåleksponering for helsepersonell. Dermalbedøvelse kan også oppnås uten nåler ved lokal applikasjon av lokalbedøvelse eller lidokain -iontoforese. Derimot kan ikke -invasiv dermal anestesi etableres på 5–15 minutter uten å forvride underliggende vev ved lidokain -iontoforese, der en direkte elektrisk strøm letter hudinntrengning av positivt ladede lidokainmolekyler når den plasseres under den positive elektroden.

En studie konkluderte med at iontoforetisk administrering av lidokain var trygg og effektiv for å gi dermal anestesi for venepunktur hos barn 6–17 år. Denne teknikken er kanskje ikke aktuelt for alle barn. Fremtidige studier kan gi informasjon om den minimale effektive iontoforetiske dosen for dermal anestesi hos barn og sammenligning av bedøvelseseffekten og tilfredsheten til lidokain -iontoforese med aktuelle bedøvelseskremer og subkutan infiltrasjon.

Ikke-farmakologiske behandlinger for smerter forbundet med venepunktur hos barn inkluderer hypnose og distraksjon. Disse behandlingene reduserte selvrapporterte smerter, og kombinert med kognitiv atferdsterapi (CBT) var reduksjonen av smerte enda større. Andre inngrep har ikke vist seg å være effektive, og dette er forslag, blåse ut luft og distraksjon med foreldretrening skilte seg ikke fra kontroll for smerter og nød.

Med nål og sprøyte

Noen helsearbeidere foretrekker å bruke en sprøyte -nålteknikk for venepunktur. Sarstedt produserer et blodtrekkingssystem (S-Monovette) som bruker dette prinsippet. Denne metoden kan foretrekkes hos eldre, de med kreft, alvorlige brannskader, fedme eller der venene er upålitelige eller skjøre. Fordi sprøyter betjenes manuelt, kan mengden sug som påføres lett kontrolleres. Dette er spesielt nyttig når venene er små som kan kollapse under sug av et evakuert rør. Hos barn eller andre omstendigheter der mengden blod som er oppnådd kan være begrenset, kan det være nyttig å vite hvor mye blod som kan fås før du fordeler det blant de forskjellige tilsetningsstoffene som laboratoriet vil kreve. Et annet alternativ er å hente blod fra innbyggende kanyler.

Blodkulturer

Det er tider når en blodkulturinnsamling er nødvendig. Kulturen vil avgjøre om det er patogener i blodet. Normalt er blod sterilt. Når du tar blod fra kulturer, bruk en steril løsning som Betadine i stedet for alkohol . Dette gjøres ved bruk av sterile hansker, mens du ikke tørker bort den kirurgiske løsningen, berører punkteringsstedet eller på noen måte kompromitterer den sterile prosessen. Det er viktig at prosedyren utføres på en så steril måte som mulig, ettersom vedvarende tilstedeværelse av hudkommensaler i blodkulturer kan indikere endokarditt, men de blir oftest funnet som forurensninger. Det oppfordres til å bruke en slipemetode for hudpreparering. Dette fjerner de øvre lagene av døde hudceller sammen med deres forurensende bakterier. Povidon-jod har tradisjonelt blitt brukt, men i Storbritannia er en 2% klorheksidin i 70% etanol eller isopropylalkoholoppløsning foretrukket, og det må være tid før det tørker. Toppene på alle beholdere som brukes når du tegner en blodkultur, bør også desinfiseres med en lignende løsning. Noen laboratorier vil aktivt motvirke jodbruk der jod antas å bryte ned gummiproppen som blod kommer inn i flasken, og dermed la forurensninger komme inn i beholderen.

Blodet samles i spesielle transportflasker, som er som vakuumrør, men formet annerledes. Blodkulturflasken inneholder transportmedier for å bevare eventuelle mikroorganismer som er tilstede mens de transporteres til laboratoriet for kulturer. Fordi det er ukjent om patogenene er anaerobe (lever uten oksygen) eller aerob (lever med oksygen), samles blod for å teste for begge. Den aerobe flasken fylles først, og deretter fylles den anaerobe flasken. Men hvis samlingen utføres ved hjelp av en sprøyte, fylles den anaerobe flasken først. Hvis det brukes et sommerfuglesamlingssett, fylles den aerobe flasken først, slik at all luft i slangen slippes ut i den oksygenholdige flasken.

Spesialdesignede blodkulturoppsamlingsflasker eliminerer behovet for enten sprøyte- eller sommerfuglinnsamlingsmetode. Disse spesialdesignede flaskene har lange halser som passer inn i de evakuerte rørholderne som brukes til vanlig innsamling av venepunkter. Disse flaskene tillater også innsamling av andre blodprøver via evakuerte rør, som kan samles opp uten ytterligere venepunktur.

Mengden blod som samles inn er avgjørende for optimal utvinning av mikroorganismer. Opptil 10 ml blod er typisk, men kan variere i henhold til anbefalingene fra produsenten av oppsamlingsflasken. Samling fra spedbarn og barn er 1 til 5 ml. Hvis det samles for lite blod, vil forholdet mellom blod-til-næringsbuljong hemme veksten av mikroorganismer. Hvis det samles for mye blod, er det risiko for sykehusindusert anemi, og forholdet mellom blod og næringsbuljong vil vippe i motsatt retning, noe som heller ikke er ledende for optimal vekst.

Flaskene blir deretter inkubert i spesialiserte enheter i 24 timer før en laboratorietekniker studerer og/eller tester det. Dette trinnet tillater det svært lille antallet bakterier (potensielt 1 eller 2 organismer) å formere seg til et nivå som er tilstrekkelig for identifisering +/- antibiotikaresistens-testing. Moderne blodkulturflasker har en indikator i basen som endrer farge i nærvær av bakterievekst og kan leses automatisk med maskin. (Av denne grunn bør de strekkodede klistremerkene som finnes på disse flaskene ikke fjernes da de brukes av laboratoriets automatiserte systemer.)

Tar blodprøver fra dyr

Blodprøver fra levende laboratoriedyr kan samles inn ved hjelp av følgende metoder:

• Blodsamling som ikke krever anestesi:
  • Saphenøs vene (rotte, mus, marsvin)
  • Dorsal pedalåre (rotte, mus)
• Blodsamling som krever anestesi (lokal/generell anestesi):
  • Haleåre (rotte, mus)
  • Tail snip (mus)
  • Orbital sinus (rotte, mus)
  • Jugular vene (rotte, mus)
  • Midlertidig kanyle (rotte, mus)
  • Blodkarskanylering (marsvin, ilder)
  • Tarsal vene (marsvin)
  • Marginal ørevene eller arterie (kanin)
• Terminalprosedyre:
  • Hjertepunktur (rotte, mus, marsvin, kanin, ilder)
  • Orbital sinus (rotte, mus)
  • Posterior vena cava (rotte, mus)

Volumet av blodprøvetaking er svært viktig hos forsøksdyr. All ikke -terminal blodinnsamling uten væskeerstatning er begrenset til 10% av det totale sirkulerende blodvolumet hos friske, normale, voksne dyr ved en enkelt anledning, og innsamling kan gjentas etter tre til fire uker. Hvis det er nødvendig med gjentatte blodprøver med korte intervaller, kan maksimalt 0,6 ml/kg/dag eller 1,0% av et dyrs totale blodvolum fjernes hver 24. time. Det estimerte blodvolumet hos voksne dyr er 55 til 70 ml/kg kroppsvekt. Det bør utvises forsiktighet for eldre og overvektige dyr. Hvis blodoppsamlingsvolumet overstiger mer enn 10% av det totale blodvolumet, kan væskebytte være nødvendig. Amming Ringers løsning (LRS) anbefales som den beste væskeerstatningen av National Institutes of Health (NIH). Hvis volumet av blodsamling overstiger mer enn 30% av det totale sirkulasjonsblodvolumet, må det tas tilstrekkelig forsiktighet slik at dyret ikke lider av hypovolemi.

Alkoholprøver av blod

Det er generelt ikke tilrådelig å bruke isopropylalkohol for å rense venepunkturstedet når du får en prøve for en blodalkoholtest . Dette har i stor grad vært relatert til de potensielle juridiske implikasjonene forbundet med bruk av alkoholbaserte rengjøringsmidler som teoretisk kan påvirke analysen. Det er markedsført en rekke politisamler for alkoholinnsamling som inneholder et natriumfluorid/kaliumoksalat-konserveringsmiddel og ikke-alkoholbaserte rensemidler for å sikre riktig innsamling. Bruk av såpe og varmt vann eller en povidon- jodpinne er anbefalte alternativer til isopropylalkohol i dette tilfellet.

Se også

• Arterielt blod tas fra en arterie i stedet for en vene

Referanser

Eksterne linker

• Flebotomi detaljer